OTIMIZAÇÃO DA EXTRAÇÃO DE PRÓPOLIS VERDE PELA ATIVIDADE ANTIFÚNGICA E INCORPORAÇÃO EM BIOFILME DE QUITOSANA

Autores

DOI:

https://doi.org/10.18066/revistaunivap.v28i59.4366

Palavras-chave:

extrato bruto, planejamento experimental, concentração inibitória mínima, Candida

Resumo

O mercado de própolis brasileiro sofreu grande expansão, levando o setor de beneficiamento a buscar a melhor forma de produzir extratos com atividades biológicas. O objetivo deste trabalho foi otimizar a extração de própolis verde pela atividade antifúngica e realizar a incorporação em um biofilme de quitosana. Os extratos foram preparados utilizando etanol, acetona, acetato de etila e isopropanol, de acordo com três planejamentos, e a concentração inibitória mínima (CIM) e a concentração fungicida mínima (CFM) foram determinadas contra Candida albicans, Candida tropicalis e Candida glabrata. A partir da CIM, realizou-se a análise de superfície de resposta, para encontrar as condições ótimas de extração para cada planejamento. Os extratos otimizados foram incorporados em biofilmes de quitosana que, posteriormente, foram avaliados quanto a espessura, permeação de vapor de água, solubilidade em água e atividade anti-Candida. Verificou-se que todos os extratos testados apresentaram atividade antifúngica contra as três espécies de Candida. Destacou-se o extrato obtido com acetona/etanol que apresentou os menores valores de CIM e CFM (0,76 - 2,50 mg/mL). Observou-se que os pontos ótimos de extração de cada planejamento foram as misturas de: acetona/isopropanol, acetona/etanol e acetato de etila/isopropanol e os biofilmes incorporados com estes extratos mostraram poucas diferenças de espessura, permeabilidade de vapor e solubilidade em água em relação ao controle. O biofilme contendo extrato obtido por acetona/isopropanol foi o que demonstrou maior atividade anti-Candida. Estes resultados mostram a importância da otimização dos processos de extração de própolis para aplicação e desenvolvimento de produtos.

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Biografia do Autor

Tabata Hana Shigihara, Universidade Tecnológica Federal do Paraná, Campus Toledo

Técnica em Química formada pelo Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Rondônia, realizou estágio não remunerado no Instituto de Química da USP, trabalhando com microalgas, sob responsabilidade da Orientadora Elise Marques Freire Cunha e Pio Colepicollo. Atualmente, é bacharelanda em Engenharia de Bioprocessos e Biotecnologia na Universidade Tecnológica Federal do Paraná e realiza a manutenção de um banco de cepas dentro da universidade.

Referências

Araújo, G. K. P. (2014). Desenvolvimento de filmes biodegradáveis de amido incorporados com extrato de própolis. [Trabalho de Conclusão de Curso Universidade Tecnológica Federal do Paraná]. RIUT http://repositorio.utfpr.edu.br/jspui/handle/1/6545

ASTM Standard D882-02. (2002). Standard test method for tensile properties of thin plastic sheeting Annual book of ASTM standards. ASTM International.

Brasil. Ministério da Agricultura. (2001). Instrução Normativa nº 3 – Anexo VI – Regulamento técnico para fixação de identidade e qualidade de própolis. Diário Oficial da República Federativa do Brasil.

Breyer, H.F.E.; Breyer, E.D.H.; Cella, I. (2016). Produção e beneficiamento da própolis (Boletim técnico, 138). https://ciram.epagri.sc.gov.br/ciram_arquivos/apicultura/acervo/BD138-producao-beneficiamento-propolis.pdf

Costa, B. (2015). Síntese, caracterização e efeito inibitório da solução de nanopartículas de quitosana na aderência e no biofilme maduro de Streptococcus mutans. Universidade Federal da Paraíba.

Dos Santos, C. R., Arcenio, F., Carvalho, E. S., Lúcio, E. M. R. A., Araújo, G. L., Teixeira, L. A., Sharapin, N. & Rocha, L. (2003). Otimização do processo de extração de própolis através da verificação da atividade antimicrobiana. Revista Brasileira de Farmacognosia, 13, 71-74. https://doi.org/10.1590/S0102-695X2003000300027

Galindo, M. V. (2017). Filmes biodegradáveis de gelatina e quitosana com adição de óleos essenciais na conservação de presunto embalado a vácuo. [Trabalho de Conclusão de Curso, Universidade Tecnológica Federal do Paraná]. RIUT http://repositorio.roca.utfpr.edu.br/jspui/handle/1/12393

Hafsa, J., ali Smach, M., Khedher, M. R. B., Charfeddine, B., Limem, K., Majdoub, H., & Rouatbi, S. (2016). Physical, antioxidant and antimicrobial properties of chitosan films containing Eucalyptus globulus essential oil. LWT-Food Science and Technology, 68, 356-364. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2015.12.050

Jimenez, A., Fabra, M. J., Talens, P., & Chiralt, A. (2012). Edible and biodegradable starch films: a review. Food and Bioprocess Technology, 5(6), 2058-2076.

Lamim, R. (2006). Quitosana e N-carboximetilquitosana: desenvolvimento de biofilmes para aplicações farmacêuticas. [Dissertação de Mestrado, Universidade do Vale do Itajaí].

Limberger, M. B. C. (2017). Desenvolvimento de filme polimérico combinado a ingrediente com propriedades antioxidantes aplicados em maçãs. [Trabalho de Conclusão de Curso, Tecnologia em Processos Químicos, Universidade Tecnológica Federal do Paraná].

Mariano, M. M, & Hori, J. I. (2019). O potencial terapêutico da própolis verde Brasileira. e-Revista Facitec, 10(1). http://periodicos.estacio.br/index.php/e-revistafacitec/article/view/6219

Nascimento, S. D., de Oliveira, T. A., dos Santos, F. K. G., Aroucha, E. M. M., & de Lima Leite, R. H. (2013). Efeito da adição de argila nas propriedades de biofilme de quitosana. Revista Verde de Agroecologia e Desenvolvimento Sustentável, 8(1), 44. https://www.gvaa.com.br/revista/index.php/RVADS/article/view/2208/2274

NCCLS. (2002). Método de Referência para Testes de Diluição em Caldo para a Determinação da Sensibilidade a Terapia Antifúngica das Leveduras; Norma Aprovada (2a.ed). Norma M27-A2 do NCCLS. http://www7.anvisa.gov.br/servicosaude/manuais/clsi/clsi_OPAS1M38-A.pdf

Perez, N. (2018). Investigação da influência do solvente nas transições eletrônicas e na liberação de CO de carboxilatostrinucleares de rutênio. [Tese de Doutorado, Faculdade de Filosofia Ciências e Letras de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo].

Rosseto, H. C., Oliveira, K. I., Tobaldini-Valerio, F. K., Toledo, L. A. S., De Francisco, L. M. B., Svidzinski, T. I. E. & Bruschi, M. L. (2016). Atividade antifúngica do extrato do subproduto da própolis frente a espécies de Candida sp. Anais do II Congresso Paranaense de Microbiologia, Simpósio Sul Americano de Microbiologia Ambiental. UEL

Sforcin, J. M., Fernandes Júnior, A., Lopes, C. A. M., Funari, S. R. C., & Bankova, V. (2001). Seasonal effect of Brazilian propolis on Candida albicans and Candida tropicalis. Journal of Venomous Animals and Toxins, 7, 139-144.. https://doi.org/10.1590/S0104-79302001000100009

Shahidi, F. & Naczk M. (1995). Food phenolics: sources, chemistry, effects and applications. Technomic Publishing.

Simões, L. S. (2014). Extração e caracterização de oleorresina de Capsicum obtida a partir de pimentas malagueta (Capsicum frutescens) e dedo-de-moça (Capsicum baccatum var. pendulum). Universidade Federal de Viçosa.

Sobral, P. J. A. (1999). Propriedades funcionais de biofilmes de gelatina em função da espessura. Ciência & Engenharia, 8(1), 60-67.

Spin Neto, R., Pavone, C., Freitas, R. D., Marcantonio, R. A. C., & Marcantonio Jr, E. (2008). Biomateriais à base de quitosana com aplicação médica e odontológica: revisão de literatura. Revista de Odontologia da UNESP, 37(2), 155-161.

Vidal, M. F. (2021).Potencial da produção de própolis no Nordeste. Fortaleza:Banco do Nordeste do Brasil, 6(153). https://www.bnb.gov.br/s482-dspace/bitstream/123456789/728/1/2021_CDS_153.pdf

Volpi, N. & Bergonzini, G. (2006). Analysis of flavonoids from propolis by on-line HPLC- electrospray mass spectrometry. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 42(3), 354-361. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2006.04.017

Wolf, K. (2007). Propriedades físico-químicas e mecânicas de biofilmes elaborados a partir de fibra e pó de colágeno. [Dissertação de mestrado, Universidade Estadual Paulista, Instituto de Biociências, Letras e Ciências Exatas].

Zaman, N.B.K; Lin, N.K. & Phing, P.L. (2018). Chitosan film incorporated with Garcinia atroviridis for the packaging of Indian mackerel (Rastrelliger kanagurta). Animal Science and Veterinary, 42(6), 666-675. https://doi.org/10.1590/1413-70542018426019918

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Publicado

2022-08-01

Como Citar

Shigihara, T. H. ., Figueiredo Pires, E. ., de Assunção Justo, D., Mirante da Silva, J. A. ., Fiori Zara, R. ., Antunes Martin, C., Cottica, S. M., & Shioji Tiuman, T. (2022). OTIMIZAÇÃO DA EXTRAÇÃO DE PRÓPOLIS VERDE PELA ATIVIDADE ANTIFÚNGICA E INCORPORAÇÃO EM BIOFILME DE QUITOSANA. Revista Univap, 28(59). https://doi.org/10.18066/revistaunivap.v28i59.4366

Edição

Seção

Ciências Biológicas